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11PAR1

Publié le : 04/01/2013 - Actualisé le 26/05/2021
Terminée Ouvert le 16 nov. 2011, Fermé le 12 déc. 2011 - Parasitologie [PAR]
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Résumé de l’opération

A l’occasion de cette opération de contrôle, on observe, d’une part, une chute spectaculaire du nombre de laboratoires concernés par le contrôle national de qualité en parasitologie (moins 980 par rapport à novembre 2010). Ceci est principalement dû au fait que, depuis janvier 2011, les laboratoires multi-sites enregistrés dans le fichier du CNQ sont considérés comme un seul laboratoire, quel que soit le nombre de sites de ce laboratoire qui réalisent les analyses contrôlées. On observe également sur les bordereaux de réponse, un pourcentage non négligeable (environ 15%) de réponses « examen transmis », ce qui laisse supposer de nombreux regroupements de laboratoires en cours.

Deux frottis de paludisme ont été proposés. L’un à Plasmodium falciparum ne comportait que des trophozoïtes âgés (en moyenne un par champ). Ils ont été confondus avec des trophozoïtes d’une autre espèce plasmodiale (en majorité P. ovale) par un quart des participants, soit une légère amélioration (+3,4%) par rapport à l’envoi précédent d’un frottis identique en 2002. Le deuxième frottis comportait uniquement des trophozoïtes de Plasmodium ovale. Tous les laboratoires ont « vu » des Plasmodium et parmi eux, 84% ont reconnu l’espèce P. ovale. Un peu plus d’un laboratoire sur dix a confondu P. ovale avec P. vivax ; ce qui n’est pas surprenant car l’absence de stades plus avancés sur ce frottis rendait le diagnostic différentiel entre les deux espèces très délicat.
Enfin, un troisième frottis parasité par Loa loa a été proposé. Pour cette microfilaire, le taux de diagnostic correct d’espèce qui était devenu excellent (environ 95%) lors des deux derniers envois en 2006 et 2003 chute à nouveau à 86%. L’erreur la plus fréquente reste la confusion avec l’espèce Mansonella perstans.

La coprologie parasitaire comportait une selle bi-parasitée avec de nombreux oeufs d’Ascaris et de rares oeufs de trichocéphale. Les résultats s’améliorent avec 6% de diagnostics supplémentaires d’oeufs d’Ascaris (97,9%) par rapport à l’envoi en 1997 d’une selle identique.
En revanche, la selle contenant des oeufs de Taenia a posé plus de difficultés qu’en 2009 avec une baisse inexpliquée de près 10% du nombre de bonnes réponses.
Quant aux kystes d’Endolimax nanus souvent rencontrés au cours de l’examen parasitologique des selles, ils ont été correctement identifiés par près de 71% de ceux qui les ont vu, ce qui améliore encore le score obtenu lors de l’envoi précédent en 2008. Parallèlement, on note une baisse importante du nombre de réponses « absence de parasite », ce qui montre que ces petits kystes ovalaires à paroi mince et au cytoplasme hyalin ne sont peut-être pas si difficiles à trouver.

En ce qui concerne la mycologie, on observe près de 90% de bons diagnostics pour Microsporum gypseum, ce qui correspond au score le plus élevé obtenu pour cette souche régulièrement proposée.

Un autre dermatophyte « Trichophyton tonsurans » était proposé pour la deuxième fois. Seuls 38% des participants ont fait un diagnostic correct (score légèrement inférieur au premier envoi) car un sur trois l’a confondu avec Microsporum audouinii. L’aspect microscopique des cultures âgées de T. tonsurans est probablement à l’origine de cette confusion. Par conséquent, il est conseillé de repiquer systématiquement les souches du CNQ dès leur arrivée, afin d’étudier la morphologie microscopique sur de cultures récentes.
Enfin, une moisissure du genre Cladosporium a également été proposée pour la deuxième fois. Près de 76% des laboratoires ayant rendu un diagnostic ont reconnu ce champignon largement retrouvé dans le sol et sur les végétaux, souvent isolé de l’air ambiant et, de ce fait, fréquent contaminant de laboratoire.

En ce qui concerne la sérologie de la toxoplasmose, chacun des 1678 laboratoires ayant déclaré réaliser le titrage des IgG et/ou la recherche des IgM anti-toxoplasme a reçu deux échantillons à tester parmi les trois proposés. L’absence d’IgM dans tous les échantillons ainsi que d’IgG dans un des échantillons a bien été relevée par respectivement 99,6% et 99,5% des participants. Pour les deux échantillons « IgG positifs », on note 0,4% de faux négatifs sur les 2175 tests réalisés.
En revanche, pour un même échantillon, le titrage des IgG par les tests ELISA conduit à des résultats très variables d’un réactif à l’autre. Ainsi, le rapport entre le titre le plus élevé et le titre le plus faible obtenu pour un même échantillon varie de 31 à 41 selon l’échantillon considéré, ceci en dépit de l’existence d’un étalon international qui permet de quantifier en UI les IgG anti-toxoplasme. Cette donnée doit être prise en compte lorsque l’on souhaite comparer les titres en IgG de sérums successifs. L’interprétation de la cinétique des anticorps ne sera possible que si les titrages sont réalisés avec le même réactif.

Enfin, en ce qui concerne la sérologie du paludisme, un sérum positif (titre moyen : 320 en IFI) a été adressé aux 69 labos ayant déclaré la réaliser. Les techniques utilisées (2/3 IFI et 1/3 ELISA) ont conduit à 100% de dépistages positifs en ELISA et à 5,6% (2 sur 36) de dépistages faussement négatifs en IFI.
Frottis sanguin : Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Loa loa / Coprologie : Ascaris lumbricoides + Trichuris trichiuria, Taenia sp., Endolimax nanus / Mycologie : Microsporum gypseum, Trichophyton tonsurans, Cladosporium sp. / Sérologie de la toxoplasmose / Sérologie du paludisme

Responsable scientifique

Jean-Charles GANTIER (Châtenay Malabry), Sandrine HOUZE (Paris), Michel MIEGEVILLE (Nantes), Annick
SIMON (Châtenay Malabry), Marc THELLIER (Paris).
Muriel FROMAGE (Ansm).

Date d'expédition

16/11/2011

Laboratoires concernés

Nombre de laboratoires concernés : 2771
Nombre de laboratoires participants : 2605

Date de clôture

12/12/2011

Paramètres analysés

Frottis sanguin : Plasmodium falciparum, Plasmodium ovale, Loa loa
Coprologie : Ascaris lumbricoides + Trichuris trichiuria, Taenia sp., Endolimax nanus
Mycologie : Microsporum gypseum, Trichophyton tonsurans, Cladosporium sp.
Sérologie de la toxoplasmose
Sérologie du paludisme